一、观赏兼食用新品种——红梗叶甜菜（论文文献综述）
王国强,张海珍,陈小文,魏平[1]（2020）在《叶甜菜立体管道水培技术》文中研究指明为有效降低叶甜菜病虫害发生率、提高产量及产值,建立了立体管道水培技术。主要介绍了立体栽培管道的结构和组成及播种育苗、营养液管理、采收等栽培技术要点。通过应用该技术,叶甜菜667 m2产量20 000 kg以上,是露地栽培的5～6倍;同时叶甜菜颜色艳丽,具有很好的观赏效果,能够作为植物景观进行整体销售,实现了产量及效益的双丰收。
刘乃新[2]（2020）在《甜菜SSR分子标记的开发应用及差异代谢产物分析》文中认为甜菜属于苋科（Amaranthaceae）甜菜属（Beta L.）,一、二年及多年生草本植物。根据用途可将生产中的栽培型甜菜分糖甜菜、根甜菜、叶甜菜及饲料甜菜。甜菜具有较高的经济价值,如糖甜菜是工业制糖的原材料,世界上食糖的30%是由糖甜菜生产出来的。根甜菜和叶甜菜食用价值及观赏价值高,是非常好的园林结合生产的资源植物。为了能够很好的开发利用甜菜资源,本研究通过利用新开发的高多态性SSR标记,对搜集到的甜菜种质资源进行了遗传多样性分析,同时对甜菜的代谢产物进行研究,旨在为我国甜菜种质资源深度开发利用及育种研究奠定研究基础。主要研究结果如下:（1）利用三种栽培型甜菜的5个甜菜品种,通过全基因重测序开发甜菜基因组InDel标记。获得InDel标记的分布特征结果为:5个甜菜品种中分别发现了 343138、317057、281435、312444和316595个InDel位点。主要分布在基因间区,约占全部位点的55%,其次是基因区。在基因区内,大部分的InDel位点分布在内含子中,蛋白质编码区中分布的InDel位点最少。InDel位点的数量随着InDel长度的增加而减少（基因间区除外）,在基因区内大部分InDel位点的长度为3 bp或其整数倍,在基因间区内大部分InDel位点度为1 bp。5个甜菜品种的InDel位点在蛋白质编码区的分布趋势和数量也与参考基因组相似,分别有4828、4810、4473、4975和4824个InDel位点,这些InDel位点的差异几乎都会引起编码蛋白质的显着变化,因此不适合进行引物开发。（2）基于NCBI甜菜参考基因组数据分析和鉴定了甜菜全基因组SSR标记分布特征。结果表明,甜菜基因组共有174218个SSR位点,SSR重复基元类型主要以五核苷酸为主,占全部SSR的33.32%,其次是三核苷酸,占全部SSR的31.80%,二核苷酸SSR位点总数的20.37%,六核苷酸SSR位点总数的12.51%,四核苷酸SSR位点最少,占总数的2.00%。甜菜基因组中的二核苷酸重复基序大部分是TA/TA重复基序（占40.59%）,三核苷酸重复基序（AAT/ATT）n,（TAA/TTA）n 和（ATA/TAT）n 为最多,分别占了 22.51%,18.01%和16.50%。在甜菜基因组上设计出的27649对引物中,通过e-PCR预测,挑选出特异性引物18271对引物定位在甜菜基因组上,平均每Mb序列有48.52对引物。9条染色体中Chr3上引物的密度最高,其次是Chr4和Chr2,密度最低的是Chr9上,与NCBI数据库登入的SSR引物相比较,SSR分子标记在染色体的密度提高了 37倍。（3）以三种栽培型甜菜20个甜菜品种为研究材料,利用RAD-seq测序技术,鉴定出甜菜中含有38884682 SNP位点,17916个SSR位点。在这些SSR位点钟去除SNP,保留InDel,20个样本间两两比较后,共获得SSR标记698个。（4）以糖甜菜、根甜菜和叶甜菜三种栽培型甜菜18个甜菜品种为研究材料,筛选确定核心引物18对,分布于9条染色体上。18个SSR的PIC范围是0.32～0.72,PIC较高的（>0.5）的SSR有10个,其中6个是通过RAD-seq测序分析获得的,RAD62的PIC值最高,4个是甜菜参考基因组开发的SSR引物。（5）利用18对SSR引物对78个甜菜不同栽培型甜菜品种进行聚类分析,结果表明:78个样本按照用途聚类分为四个类群,第一类群资源仅有1份种质,为俄罗斯甜菜品种,引入中国后很少参与甜菜育种,与其它甜菜品种关系较远且保持独立一支;第二类群共有3份种质,均为黄梗叶甜菜;第三类群资源共有50份种质,以糖甜菜种质（46份）为主,同时与3份红梗叶甜菜和1份红叶甜菜有较近的亲缘关系;第四类群以叶甜菜品种（18份）为主,同时包括2份饲料甜菜、1份红根甜菜、3份糖甜菜,这可能与其它各类型甜菜最初起源于叶甜菜有关。叶甜菜、糖甜菜聚类明确,不同叶色甜菜起源复杂,红色系甜菜（红梗叶甜菜、红根甜菜、红叶甜菜）又存在多起源,黄梗叶甜菜嵌在叶甜菜、糖甜菜两个类群中。本分类结果较好的反应了品种间的谱系关系,与应用分类基本一致。可以认为基于基因组学开发的分子标记在鉴定甜菜亲缘关系中是有效的。（6）利用非靶向代谢组学技术分析糖甜菜、根甜菜、黄梗叶甜菜代谢产物,共鉴定甜菜代谢产物2545个。其中明确化学名称的物质有260个。两两比对确定可靠差异代谢物共计99个。三种甜菜样本差异代谢产物分布在56个KEGG代谢通路中。黄梗叶甜菜和根甜菜的差异代谢物较少,支持了分子标记聚类分析认为这两类甜菜存在较近的亲缘关系的结果。（7）确定根甜菜和黄梗叶甜菜间17种差异代谢物,分布在18个代谢通路中;糖甜菜和根甜菜间34种差异代谢物分布到31个KEGG途径。糖甜菜和叶甜菜间89种差异代谢物,分布在55个代谢通路中。这些代谢物和代谢途径的差异为探索不同栽培类型甜菜在特定生长阶段经济价值及代谢机理研究提供重要信息。（8）对糖甜菜、根甜菜和叶甜菜三种类型甜菜几种典型具有生物活性的功能性代谢产物的含量差异比较发现:皂苷类物质齐墩果酸3-O-葡萄糖酸苷在糖甜菜、根甜菜中含量较高;橙皮素含量在根甜菜和黄梗叶甜菜中较高;乙内酰脲衍生物尿囊素在糖甜菜中含量约是另外两种类型甜菜的3倍;甲基硫氧嘧啶是一种含氮杂环化合物,在糖甜菜中含量最高;在黄梗叶甜菜和根甜菜中,血清素显着高于糖甜菜。萘醌类化合物散沫花素在糖甜菜中是另外两种甜菜含量的3-4倍。在甜菜中新发现的具有生物活性的功能代谢物有棕榈酰溶血磷脂酸、萜类化合物诺米林,且在黄梗叶甜菜和根甜菜中,棕榈酰溶血磷脂酸显着高于糖甜菜;萜类化合物诺米林在根甜菜和黄梗叶甜菜中的含量约是糖甜菜中诺米林含量的2倍以上。
韩娅楠[3]（2016）在《红柄甜菜酪氨酸酶基因BvcTYR的功能分析》文中进行了进一步梳理甜菜素是一类天然的水溶性含氮色素,包括甜菜红素和甜菜黄素,主要存在于石竹目植物中。它与花青素相互排斥,具有着色、传导信号、调节渗透压、清除自由基和抗氧化作用,广泛应用于食品着色、医疗保健、化妆品制造等行业。在甜菜素生物合成途径的三个关键酶促反应中,L-酪氨酸的羟基化（单酚酶活性）和L-多巴的氧化（双酚酶活性）,这两个反应步骤被认为是由酪氨酸酶催化完成的,但缺乏分子生物学证据。实验室前期从红柄甜菜中分离出了酪氨酸酶及其基因BvcTYR。本研究对该基因的功能进行了解析,得到如下主要结果：红柄甜菜基因组中至少含有6个拷贝的BvcTYR或其同源基因。qRT-PCR结果表明,BvcTYR转录水平在根部最高,其次为叶片和叶柄,且随生育期而发生变化,转录本丰度在根部的8叶期、叶片和叶柄的10叶期达到峰值。BvcTYR的酶活也展现出类似的趋势,在根部的活性远高于叶片和叶柄,且活性随着生育期而发生变化,但其峰值期出现在10叶期,较转录本丰度的峰值期落后1个时期。甜菜素的含量也是根部远高于叶片和叶柄,在10叶期达到峰值。由这些结果推测,BvcTYR的转录本丰度、酶活性与甜菜素含量之间具有相关性。此外,亚细胞定位结果表明,BvcTYR可能为细胞质定位蛋白。在花青素植物烟草中稳定表达了BvcTYR。体内和体外酶活检测显示,超表达的烟草植株不仅获得了羟基化L-酪氨酸和L-酪胺的单酚酶活性,而且增强了氧化L-多巴的双酚酶活性,为野生型的3-5倍。将超表达烟草中的BvcTYR进行RNA干扰后,BvcTYR的表达量显着降低,单酚酶和双酚酶活性均显着降低。在甜菜素植物青杆甜菜中瞬时超表达了BvcTYR。超表达青杆甜菜的BvcTYR表达量为野生型的2倍,单酚酶和双酚酶活性比野生型分别提高了20%和95%。在红叶甜菜中RNA干扰了BvcTYR,被干扰的叶片褪去部分红色,在绿叶红柄甜菜的叶片中,空载体EV和RNAi都显着增加了BvcTYR转录本的丰度、L-酪氨酸的羟基化酶活性和L-多巴的氧化酶活性、甜菜红素与甜菜黄素的含量,但由于RNAi抑制了酪氨酸酶的部分酶活反应,增加量较EV少。对绿叶红柄甜菜的叶柄进行了BvcTYR的RNA干扰,受干扰的红色叶柄褪色,呈现出淡黄色。以上结果得出,克隆的红柄甜菜酪氨酸酶基因BvcTYR,可能至少参与了甜菜素生物合成途径中L-酪氨酸的羟基化,即第1步反应。甜菜素植物酪氨酸酶基因功能的确定,不仅为甜菜素生物合成途径的解析提供了分子生物学支持,而且为在非甜菜素代谢植物中异源合成甜菜素奠定了基础。
郝天民,刘二春[4]（2015）在《紫色蔬菜有益养生》文中指出改革开放以来,随着国民经济的发展和生活水平的提高,我国人民的食物构成发生了重大变化,从改革开放前的以黄色食品（玉米）为主逐渐改变为以白色食品（大米、面粉）为主,接着,又增加了大量的红色食品（肉类）和绿色食品（蔬菜、水果）。近年来,全民的养生保健意识逐渐加强,其中的食品养生保健已经引为人们的高度重视,于是,紫色蔬菜开始逐渐进入人们的视野,成为餐桌上一道艳丽的风景线。然而,对紫色蔬菜的品种、
郝天民,林晓明,李志娟,韩涛[5]（2009）在《好品种、新技术——农业园区里的“主角”》文中提出前几期的栏目中,我们曾经讨论过现代农业园区的现状和趋势,介绍过观赏蔬菜的发展前景。在杂志出刊后的一段时间里,编辑部的电话一直络绎不绝,来自北京、天津、河南、广东、云南等地的众多想从事农业园区建设的热心读者纷纷来电咨询。应广大读者朋友的要求,我们继续针对农业园区的内容策划了本期专题,想就一些适合在农业园区应用发展的蔬菜新品种、新技术、新栽培模式进行介绍。目的只有一个,就是想帮您开拓思路,让您在创业的路上越走越顺!
辽宁农业信息资源平台[6]（2008）在《赏食兼用 红梗叶甜菜》文中研究表明红梗叶甜菜为藜科甜菜属的变种,是近年从荷兰引进并经多年筛选出的红梗绿叶观赏兼食用型新品种。该品种目前有小面积种植,供应宾馆、饭店和超市。同时因其外观艳丽多彩,色泽诱人,具有很好的观赏性,不少花卉爱好者
北京市农业技术推广站[7]（2003）在《观赏兼食用新品种——红梗叶甜菜》文中研究说明
二、观赏兼食用新品种——红梗叶甜菜（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、观赏兼食用新品种——红梗叶甜菜（论文提纲范文）
（1）叶甜菜立体管道水培技术（论文提纲范文）
| 1 立体管道栽培优势 |
| 1.1 防止土传病害 |
| 1.2 提高产量 |
| 1.3 增加观赏性 |
| 2 立体管道系统构造 |
| 3 栽培技术要点 |
| 3.1 品种选择及播种育苗 |
| 3.2 洗苗定植 |
| 3.3 营养液管理 |
| 3.4 病虫害防治 |
| 3.5 采收 |
（2）甜菜SSR分子标记的开发应用及差异代谢产物分析（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 绪论 |
| 1.1 甜菜的概述 |
| 1.1.1 甜菜的起源、演化和分布 |
| 1.1.2 甜菜分类的研究现状 |
| 1.1.3 甜菜栽培型变种 |
| 1.1.4 甜菜的应用价值 |
| 1.2 植物SSR标记开发及应用研究进展 |
| 1.2.1 植物SSR标记的开发 |
| 1.2.2 植物SSR分子标记技术的应用 |
| 1.2.3 甜菜SSR标记的开发及应用研究进展 |
| 1.3 植物种质资源遗传多样性分析研究进展 |
| 1.3.1 遗传多样性的研究概念与意义 |
| 1.3.2 遗传多样性分析方法研究 |
| 1.4 代谢组学 |
| 1.4.1 代谢组学研究流程 |
| 1.4.2 代谢组学检测技术 |
| 1.4.3 代谢组学数据处理 |
| 1.4.4 代谢组学数据库 |
| 1.5 甜菜代谢组学研究进展 |
| 1.6 本研究的目的和意义 |
| 1.7 研究内容和技术路线 |
| 1.7.1 研究内容 |
| 1.7.2 技术路线 |
| 2 基于全基因组重测序技术分析甜菜InDel标记 |
| 2.1 材料和方法 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 试验方法 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 甜菜品种的全基因组重测序分析 |
| 2.2.2 重测序结果与参考基因组的比对分析 |
| 2.2.3 InDel位点的注释分析 |
| 2.2.4 InDel序列长度分布分析 |
| 2.3 讨论 |
| 2.3.1 重测序甜菜品种基因组中InDel位点的分布 |
| 2.3.2 甜菜品种基因组中InDel序列长度分布 |
| 2.4 本章小结 |
| 3 甜菜全基因组SSR标记位点分析 |
| 3.1 材料和方法 |
| 3.1.1 基因组SSR位点的搜索 |
| 3.1.2 电子PCR引物设计 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 甜菜SSR基因座的丰度和相对丰度 |
| 3.2.2 甜菜SSR类型和频率特征 |
| 3.2.3 SSR引物的电子PCR(e-PCR) |
| 3.3 讨论 |
| 3.3.1 甜菜全基因组SSR的分布 |
| 3.3.2 甜菜全基因组SSR多态性潜力分析 |
| 3.4 本章小结 |
| 4 基于RAD-seq测序技术开发甜菜多态性SSR标记 |
| 4.1 材料和方法 |
| 4.1.1 试验材料 |
| 4.1.2 试验方法 |
| 4.1.3 搜索SNP和SSR位点 |
| 4.1.4 不同样品间测序数据比对开发特异性SSR标记 |
| 4.1.5 SSR引物设计及电子PCR引物多态性预测 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 RAD测序并对其结果进行整合 |
| 4.2.2 GO分类 |
| 4.2.3 搜索SNP位点 |
| 4.2.4 群体SNP-InDel统计 |
| 4.2.5 不同样品SSR位点相互比对分析 |
| 4.3 讨论 |
| 4.4 本章小结 |
| 5 甜菜种质资源遗传多样性分析 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 试验材料 |
| 5.1.2 试验方法 |
| 5.2 结果与分析 |
| 5.2.1 甜菜基因组DNA浓度与纯度检测 |
| 5.2.2 提取甜菜DNA的琼脂糖凝胶电泳分析结果 |
| 5.2.3 不同提取方法获得的甜菜DNA对PCR扩增产物检测结果的影响 |
| 5.2.4 不同PCR扩增程序扩增效果比较 |
| 5.2.5 SSR引物多态性评价 |
| 5.2.6 甜菜种质资源SSR标记聚类分析 |
| 5.2.7 甜菜种质资源遗传多样性比较 |
| 5.3 讨论 |
| 5.4 本章小结 |
| 6 不同栽培型甜菜差异代谢物分析 |
| 6.1 材料与方法 |
| 6.1.1 试验材料 |
| 6.1.2 试剂、仪器与耗材 |
| 6.2 试验方法 |
| 6.2.1 代谢物提取 |
| 6.2.2 检测分析 |
| 6.2.3 数据评估和分析方法 |
| 6.3 结果与分析 |
| 6.3.1 样本质控分析 |
| 6.3.2 主成分分析结果 |
| 6.3.3 全部样本聚类热图分析 |
| 6.3.4 OPLS-DA分析及置换检验 |
| 6.3.5 差异代谢物的筛选和聚类分析 |
| 6.3.6 不同栽培类型甜菜差异代谢物及KEGG pathway综合比对分析 |
| 6.3.7 根甜菜和叶甜菜样本间差异代谢物及KEGG pathway分析 |
| 6.3.8 糖甜菜和根甜菜样本间差异代谢物及KEGG pathway分析 |
| 6.3.9 糖甜菜和叶甜菜样本间差异代谢物及KEGG pathway分析 |
| 6.3.10 不同栽培型甜菜其他差异代谢产物分析 |
| 6.4 讨论 |
| 6.4.1 甜菜色素研究进展 |
| 6.4.2 甜菜皂苷及黄酮类成分比较 |
| 6.5 本章小节 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 附录A 简化基因组测序程序 |
| 附录B DNA提取方法 |
| 附录C 甜菜种质资源遗传多样性分析试验材料 |
| 附录D 不同栽培类型甜菜代谢产物总表 |
| 附录E 不同栽培类型甜菜差异代谢物总表 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 |
| 致谢 |
（3）红柄甜菜酪氨酸酶基因BvcTYR的功能分析（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 甜菜素的概述 |
| 1.1.1 植物色素与甜菜素 |
| 1.1.2 甜菜素的分类 |
| 1.1.3 甜菜素的理化性质 |
| 1.1.4 甜菜素的功能 |
| 1.1.5 甜菜素的应用 |
| 1.2 植物中甜菜素的生物合成途径及关键酶的功能研究 |
| 1.3 酪氨酸酶概述 |
| 1.3.1 酪氨酸酶的结构以及与甜菜素合成的关系 |
| 1.3.2 酪氨酸酶的活性 |
| 1.3.3 多酚氧化酶在细胞中的定位 |
| 1.3.4 多酚氧化酶和酪氨酸酶基因的克隆及特点 |
| 1.4 酪氨酸酶的应用 |
| 1.5 本研究的目的和意义 |
| 第二章 实验材料与方法 |
| 2.1 材料及仪器设备 |
| 2.1.1 实验材料 |
| 2.1.2 实验试剂 |
| 2.1.3 主要实验仪器及设备 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 常用培养基及溶液的配制 |
| 2.2.2 植物材料的培养条件 |
| 2.2.3 DNA的提取 |
| 2.2.4 RNA的提取纯化、反转录及定量Real-time PCR(qRT-PCR) |
| 2.2.5 基因全长cDNA克隆 |
| 2.2.6 载体的构建及转化 |
| 2.2.7 转基因材料的获得 |
| 2.2.8 植物瞬时转化方法 |
| 2.2.9 Southern blot |
| 2.2.10 外源蛋白表达、SDS-PAGE及Western blot |
| 2.2.11 植物酪氨酸酶体内及体外酶活检测 |
| 2.2.12 甜菜素的提取与测定 |
| 2.3 实验中用到的引物序列 |
| 第三章 结果与分析 |
| 3.1 红柄甜菜酪氨酸酶基因BvcTYR序列的验证和原核表达 |
| 3.1.1 红柄甜菜酪氨酸酶基因BvcTYR基因序列的验证 |
| 3.1.2 氨基酸序列比对及进化树分析 |
| 3.1.3 原核表达BvcTYR |
| 3.2 BvcTYR的亚细胞定位 |
| 3.2.1 BvcTYR与GFP共表达载体的构建 |
| 3.2.2 BvcTYR的亚细胞定位 |
| 3.3 红柄甜菜基因组的Southern杂交分析 |
| 3.4 红柄甜菜BvcTYR组织表达检测及酶活分析 |
| 3.4.1 转录水平分析BvcTYR的表达 |
| 3.4.2 红柄甜菜不同组织中酪氨酸酶单酚和双酚酶活性分析 |
| 3.4.3 红柄甜菜不同组织中甜菜素含量分析 |
| 3.5 酪氨酸酶反应产物的光谱分析及pH值对甜菜素的影响 |
| 3.5.1 酪氨酸酶反应产物的光谱分析 |
| 3.5.2 pH值影响甜菜素稳定性 |
| 3.6 BvcTYR在烟草中的异源表达 |
| 3.6.1 35S：BvcTYR超表达烟草的获得 |
| 3.6.2 35S：BvcTYR烟草的Southern杂交分析 |
| 3.6.3 35S：BvcTYR烟草的Western blot分析 |
| 3.6.4 35S：BvcTYR超表达烟草的酶活性分析 |
| 3.7 BvcTYR RNAi烟草的表达分析 |
| 3.7.1 干扰空载体启动子的改造 |
| 3.7.2 BvcTYR RNAi烟草的表达分析 |
| 3.8 BvcTYR的同源超表达及RNA干扰 |
| 3.8.1 35S：BvcTYR在青杆甜菜的超表达 |
| 3.8.2 红柄甜菜BvcTYR的RNA干扰 |
| 第四章 结论与讨论 |
| 4.1 讨论 |
| 4.1.1 BvcTYR与甜菜素代谢植物PPOs相关性的探讨 |
| 4.1.2 BvcTYR与甜菜素合成相关的生化证据 |
| 4.1.3 BvcTYR与甜菜素合成相关的分子方面的证据 |
| 4.1.4 BvcTYR超表达烟草创伤诱导红色素的产生 |
| 4.1.5 探讨BvcTYR在青杆甜菜超表达 |
| 4.1.6 甜菜素合成酶的亚细胞定位及功能分析 |
| 4.2 结论 |
| 4.3 展望 |
| 参考文献 |
| 附录Ⅰ 化学诱导型转EPSPS小麦的获得及功能验证 |
| 第一章 引言 |
| 第二章 实验材料与方法 |
| 第三章 结果与分析 |
| 第四章 讨论与结论 |
| 参考文献 |
| 附录Ⅱ |
| 致谢 |
| 作者简介 |
（5）好品种、新技术——农业园区里的“主角”（论文提纲范文）
| 稀特野蔬菜在现代农业园区中的作用 |
| 无土栽培模式的展示 |
| 廊架式栽培的凸现 |
| 人造景观的基础素材 |
| 芳香蔬菜、药用蔬菜进入人们的视野 |
| 山野菜的人工栽培 |
| 发展稀特野蔬菜的意义 |
| 促进了蔬菜产业化的发展进程 |
| 加快了蔬菜品种的更新换代，丰富了菜篮子和餐桌，提高了农民收入 |
| 蔬菜栽培新技术的迅速推广应用 |
| 观光、休闲农业的一道闪亮风景线 |
| 链接： |
| 蔬菜成“树” |
| 栽培模式不断创新 |
| 规模宏大、奇思妙想的蔬菜景点 |
四、观赏兼食用新品种——红梗叶甜菜（论文参考文献）
- [1]叶甜菜立体管道水培技术[J]. 王国强,张海珍,陈小文,魏平. 蔬菜, 2020(07)
- [2]甜菜SSR分子标记的开发应用及差异代谢产物分析[D]. 刘乃新. 东北林业大学, 2020
- [3]红柄甜菜酪氨酸酶基因BvcTYR的功能分析[D]. 韩娅楠. 中国农业大学, 2016(08)
- [4]紫色蔬菜有益养生[J]. 郝天民,刘二春. 农家书屋, 2015(03)
- [5]好品种、新技术——农业园区里的“主角”[J]. 郝天民,林晓明,李志娟,韩涛. 蔬菜, 2009(05)
- [6]赏食兼用 红梗叶甜菜[J]. 辽宁农业信息资源平台. 农民科技培训, 2008(07)
- [7]观赏兼食用新品种——红梗叶甜菜[J]. 北京市农业技术推广站. 农村百事通, 2003(24)