一、观赏草莓“粉红熊猫”（论文文献综述）
张松阳[1]（2020）在《红花草莓ABC基因家族鉴定及FpABC基因克隆表达分析》文中认为红花草莓为草莓家族中新进成员,为属间杂种（Fragaria×Potentilla）,具有很高的观赏和食用价值。花青素苷的转运对花色变化有重要作用,ABC基因家族为超基因家族,具有很多成员,可以参与植物细胞内各类物质的转运,有重要的作用,但其如何对红花草莓花瓣中花青素苷的转运还未有报道。本研究通过红花草莓转录组数据,筛选出131个红花草莓ABC基因。对筛选出的基因家族成员进行生物信息学分析和基因结构鉴定,通过系统进化树构建和趋势分析,筛选出3个与花青素苷转运相关的基因,进行克隆和时空表达模式分析,分析出它们在不同发育时期,不同组织部位和不同花色的表达特性。主要结果如下:（1）对红花草莓品种‘四季红’的不同花蕾发育阶段进行转录组测序,从转录组数据中,共鉴定出131个ABC家族成员,分别命名为FpABC1-131。通过对其理化性质分析得出,这些FpABC基因编码的蛋白质含有80-4352个,蛋白质分子量约在6775至485455Da之间,等电点4.25-6.44。据系统进化分析,将131个红花草莓FpABC基因归于8个亚家族。其中ABCB、ABCC、ABCG亚家族成员最多,其他亚家族成员相对较少。同一亚家族成员在保守基序与结构域的种类、数量和结构形式上表现出一定的相似性,ABCG和ABCB亚家族含有多种保守结构域。红花草莓FpABC基因所含的保守基序数量在1到36个之间,外显子数量1到36个之间,表明其是一个庞大的基因家族,每个亚族的功能差异很大;基于二倍体森林草莓为参考基因组进行染色体定位分析,红花草莓FpABC基因家族在7条染色体上不均匀分布,主要在第6条染色体上,并且存在串联重复。从红花草莓转录组花瓣三个时期的基因表达分析中,所有基因至少会在一个时期表达,并且相同亚族基因表达时期几乎相同。此外,在所有红花草莓FpABC基因的启动子区域中也鉴定出参与转录调控的常见顺式作用元件。（2）在红花草莓‘四季红’花瓣中扩增克隆得到了与花青素苷转运相关基因的完整CDS序列,FpABC55在红白花的克隆比对中存在差异,FpABC33、FpABC34则反之。FpABC33、FpABC34、FpABC55-H、FpABC55-B序列长度分别为2250bp、2238bp、2169bp、2169bp,分别编码着750、736、723、723个氨基酸,基因登录号分别为MT362908、MT362909、MT362910、MT362911。经多序列对比分析发现,FpABC33、FpABC34分别与多种其它物种同源蛋白质序列的一致性超过80%。通过对这三个基因与其他物种间进化关系表明,月季与红花草莓的亲缘关系最近。这3个转运蛋白的二级结构具有很大的相似性,其中占比例最重的部分都为α-螺旋（Alpha helix）,其次是无规则卷曲（Random coil）。FpABC33和FpABC34具有相同的PLN03140超家族结构域,而FpABC55具有3a01204超家族结构域。（3）通过转录组筛选的ABCC基因进行实时荧光定量实验（qRT-PCR）。结果显示,FpABC33、FpABC34、FpABC55均在红花中表达量最高,在浅粉花中几乎表达量都是最低的,差异显着。红花表达量约为白花表达量的2倍;在不同时期蕾期（L）、转色期（Z）、大蕾期（D）的表达分析中,结果表明,FpABC33、FpABC34、FpABC55都在大蕾期的表达量最高,蕾期表达量相对较低,约为其4-8倍。在其他基因中,FpABC108和FpABC69的表达水平呈下降趋势,在大蕾期的表达水平最低;在不同组织部位花瓣（Petal）、果实（Fruit）、叶片（Leaf）、叶柄（Petiole）、匍匐茎（Runner）中,均差异明显,FpABC33、FpABC34、FpABC55均在花瓣中的表达量最高,其余则在叶中的表达量最高。
洪燕红[2]（2020）在《‘莓红’草莓花瓣发育过程花色苷变化及相关基因的差异表达研究》文中研究说明本研究以红花草莓品种‘莓红’为研究材料,观察其花器官动态变化和花朵发育过程中花色表型变化,检测不同发育时期花瓣的色素含量,并对四个时期的花瓣进行转录组测序,分析不同发育时期草莓花瓣基因的表达差异,筛选草莓花不同发育时期花色苷生物合成的相关结构基因及调节基因,对这些差异基因进行qRT-PCR验证,主要研究结果如下:1.‘莓红’草莓是一个具有较大观赏和食用价值的草莓品种,花瓣数目差异大,具有形成重瓣花的潜力。‘莓红’草莓花朵花瓣数以5枚、6枚和7枚为主,萼片数量以10枚、11枚和12枚为主,雄蕊数20～30个之间,花瓣数与萼片数之间存在显着正相关;单花花冠径20～30 mm,花瓣数与花冠径大小之间不存在相关性;花瓣大多数呈重叠状态;花苞4 mm时,花瓣尚未着色,再经过6 d花瓣就可完全展开,花朵达完全盛开状态;花朵完全盛开时花瓣红蓝度色值a*为55.00～60.00,黄绿度色值b*为0.00～10.00,彩度C*为55.00～62.50,C*主要由a*贡献。2.花色苷的积累是‘莓红’草莓花瓣颜色变红的原因。从花苞到花瓣半展状态,花瓣中花色苷含量不断积累,当花朵完全盛开时,花瓣中花色苷降解,含量降低;质谱分析共鉴定出花瓣中含矢车菊素-3-O-葡萄糖苷和天竺葵素-3-O-葡萄糖苷两种花色苷物质。3.对四个发育时期（S1、S2、S3和S6）花瓣进行转录组测序得到的样本clean reads均达99.83%以上,有效reads皆在98.42%以上,与参考基因组（Fragaria x ananassa Camarosa Genome Assembly v1.0.a1）的比对率均达到89%以上;对差异基因进行趋势分析,共得到34036个趋势基因;共有7512个差异趋势基因得到KEGG注释,其中有94个基因参与类黄酮生物合成,6个基因（即maker-Fvb7-4-augustus-gene-3.55、maker-Fvb7-3-augustus-gene-14.53、maker-Fvb7-1-augustus-gene-319.41、maker-Fvb7-2-snap-gene-316.69、maker-Fvb7-2-snap-gene-279.55和maker-Fvb7-4-snap-gene-17.52）参与花青素生物合成。从差异基因中可鉴定出124个与花色苷合成途径相关的差异结构基因（包含修饰与转运相关基因）,同时鉴定出109个R2R3-MYB和148个b HLH差异基因,筛选出可能参与花色苷合成的6个R2R3-MYB（即Fa MYB82、Fa MYB6、Fa MYB90、Fa MYB305-1、Fa MYB305-2和Fa MYB305-3）和2个b HLH（即Fab HLH35和Fab HLH94）转录因子,6个R2R3-MYB和2个b HLH转录因子经系统发育树分析发现分别都与拟南芥等参与花色苷调控的相关转录因子聚集在一起,表明这些基因都极有可能参与花色苷的生物合成。4.qRT-PCR结果显示‘莓红’草莓花瓣中花色苷合成相关的10个结构基因和8个调节基因的相对表达量基本都与转录组测序得到的表达量变化趋势一致,4个结构基因（即Fa4CL-1、Fa4CL-2和Fa DFR和Fa3GT）与花色苷含量间具有强正相关,5个R2R3-MYB（即Fa MYB6、Fa MYB305-1、Fa MYB305-2、Fa MYB305-3和Fa MYB90）和1个b HLH（Fab HLH94）与花色苷含量间具有显着正相关性,与结构基因Fa PAL、Fa4CL、Fa DFR和Fa3GT之间呈极显着极强正相关;另两个转录因子（即Fa MYB82和Fab HLH94）与花色苷含量呈负相关,与Fa PAL、Fa4CL、Fa DFR和Fa3GT之间呈极显着极强负相关,表明所选的8个转录因子可能通过调节Fa PAL、Fa4CL、Fa DFR和Fa3GT的表达而影响‘莓红’草莓花瓣花色苷的合成。
黄莹莹[3]（2020）在《红花草莓花青素苷合成结构基因FpDFR、FpANS及启动子的克隆与分析》文中指出红花草莓（red-flowered strawberry）是由开白花的栽培草莓（Fragaria×ananassa）与开红花的沼委陵菜（Potentilla palustris）通过远缘杂交方法育成的属间杂种,是草莓家族的新成员,具有很高的观赏价值,同时果实亦可食用,具有很好的发展空间与前景。近几年以来,随着高通量测序技术的发展,可以为红花草莓花瓣呈色的研究机理提供新的思路。红花草莓杂交后代花瓣发生显着的性状分离,后代的花色从白色一直变化到红色,本文以转录组测序分析等手段,以红花草莓品种‘四季红’杂交后代的红色花瓣和白色花瓣为试材,期望从转录水平分析花色的差异。基于前期的研究基础,克隆红花草莓花瓣花青素苷合成途径中关键结构基因和启动子序列,分析不同花色的结构特点,这对进一步了解红花草莓花色调控机制具有重要意义。主要研究结果如下:以红花草莓品种‘四季红’为试材,选取其花瓣发育过程中具有明显颜色变化的三个发育时期,即蕾期（PFL）、转色期（PFZ）、大蕾期（PFD）的花瓣样品,进行高通量测序。通过基因功能注释,筛选花青素苷合成途径的关键结构基因DFR和ANS,根据FPKM值和log2（foldchange）,初步筛选3个DFR基因家族成员FpDFR1、FpDFR2、FpDFR3和1个ANS基因家族成员FpANS1。根据TPM值,可以看出这四个基因随着花蕾发育,表达量逐渐增加。以红花草莓莓品种‘四季红’和杂交后代白花‘B1’的盛花期花瓣为材料提取RNA,克隆了4个结构基因FpDFR1、FpDFR2、FpDFR3与FpANS1,其开放阅读框ORF长度分别为1077bp、1050bp、1116bp、1152bp,并分别编码358个、349个、371个、383个氨基酸。结构基因在红白花中克隆序列相似度高达97%以上,且4个结构基因各自均拥有特殊的保守结构域。本文所克隆成功的结构基因FpDFR1、FpDFR2、FpDFR3拥有一个保守的NADPH结合位点、一个底物特异性结合位点这两个特殊结构域;三个DFR基因均属于NADB-Rossmann家族,拥有独特的FR-SDRe元件;FpANS1基因属于PLN03178超家族,具有[2OG-Fe（II）]双加氧酶家族基因保守结构域,具有Fe离子结合位点与α-酮戊二酸的活性位点。根据氨基酸序列比对,FpDFR2第134位氨基酸为天冬酰胺（N）,属于Asn型DFR;FpDFR1基因的特异性结合位点为丙氨酸（A）,FpDFR3第134位氨基酸为苏氨酸（T）,后两者DFR类型均属于非Asn/Asp型。亚细胞定位于细胞核等其他位置蛋白。与其他物种同源性比对结果几乎都与蔷薇科植物同源性最高。对红花草莓杂交后代不同花色、不同发育阶段的花瓣和不同组织部位进行实时荧光定量实验。结果表明,不同组织部位花瓣（Petal）、果实（Fruit）、叶（Leaf）、叶柄（Petiole）、匍匐茎（Runner）中,红花草莓的DFR1与DFR2基因在果实中的表达量最高,DFR3与ANS1基因在花瓣中表达量最高;在不同花色的红花草莓的基因表达分析中,5个花色红色（Red）、深粉（Deep pink）、粉（Pink）、浅粉（Light pink）、白（White）中,基因均在红花中表达量最高,FpDFR1与FpDFR3在浅粉花中表达量最低,FpDFR2在深粉花中表达量最低,FpANS1基因在白色花瓣中表达量最低;在红花草莓3个不同时期的表达分析中,如L（蕾期）、Z（转色期）、D（大蕾期）,所有基因在大蕾期（PFD）表达量是最高的,在蕾期（PFL）表达量最低,而基因DFR3比较特殊,在转色期表达量最低,说明基因的表达量受到时间或转录因子等多种因素的调控,十分复杂,并不是一成不变的。以红花草莓莓品种‘四季红’和杂交后代白花‘B1’的盛花期花瓣为材料提取DNA,克隆4个基因的启动子序列FpDFR1Q、FpDFR2Q、FpDFR3Q、FpANS1Q。启动子克隆结果表明,除FpANS1Q外,红花与白花中所克隆的DFR启动子序列相同。除FpDFR1Q之外的3个启动子克隆长度均大于2000bp,启动子区域除TATA-box与CAAT-box元件所占比重较大外,还有较多的Box4、G-box、ARE与ABRE等顺势作用元件。通过对克隆启动子的MYB结合位点的分析发现,相同基因启动子红花与白花中MYB的结合位点的数量没有区别,但不同基因启动子间MYB的结合位点的数量有较明显差别,FpDFR2Q的MYB结合位点最多,表达量也最高。
王海峰[4]（2019）在《红花草莓花色相关miRNA的鉴定与分析》文中指出红花草莓（Red-flowered strawberry）是草莓家族的新成员,为属间杂种,其红花性状是由开红花的沼委陵菜（Potentilla palustris）利用远缘杂交的方式导入至白花栽培草莓（Fragaria×ananassa）中去的。相比传统栽培草莓而言,红花草莓不仅具有丰富的营养价值,而且具有良好的观赏价值。其花红果艳,能够应用于园林绿化和盆栽观赏,是一种新型的兼具观赏和食用的草莓,具有很好的发展潜力。花青素苷是红花草莓得以呈现红色的物质基础,本研究以红花草莓品种‘四季红’为试材,选取了红花草莓花瓣发育过程中具有明显颜色变化的三个发育时期,即蕾期（PFL）、转色期（PFZ）、大蕾期（PFD）的花瓣样品,构建了9个小RNA文库（PFL1、PFL2、PFL3、PFZ1、PFZ2、PFZ3、PFD1、PFD2、PFD3）和1个混合样品的降解组文库（PF）。通过应用高通量测序技术挖掘参与红花草莓花瓣发育过程中的miRNAs,重点发现能够参与花青素苷生物合成调控的miRNAs。利用TargetFinder软件及降解组测序技术对红花草莓小RNA测序获得的miRNA进行靶基因的预测和验证。此外,通过应用geNorm和NormFinder等程序对qRT-PCR定量的结果进行分析,筛选出适合用于红花草莓miRNA表达水平相对定量的表达稳定的内参基因,为红花草莓花色相关miRNAs的进一步研究奠定基础。主要结果如下:（1）9个小RNA文库（PFL1、PFL2、PFL3、PFZ1、PFZ2、PFZ3、PFD1、PFD2、PFD3）通过小RNA测序技术得到的原始Total reads数分别为1.70×107、1.59×107、1.47×107、1.27×107、1.27×107、1.46×107、1.18×107、1.26×107和1.32×107条。共鉴定到1,703个miRNAs,其中665个miRNAs在9个样品小RNA文库中均存在。在3个不同发育时期的花瓣中共鉴定到317个显着差异表达的miRNAs,其中有127个miRNA的差异程度达到了极显着水平。（2）通过降解组测序,在PF文库得到2.37×107条原始reads。当去除掉3’接头序列后,发现PF降解组文库中可以匹配到草莓基因组上的reads为2.34×107条,目前草莓已注释的转录本数量为39,487个,降解组文库PF能够匹配到草莓已注释转录本数为34,202个,占已注释草莓总转录本的比例为86.26%。应用TargetFinder软件进行miRNA的靶基因预测,结果显示1365个miRNA对应的14,406个靶基因。利用Cleaveland软件对降解组测序数据与转录组数据进行降解位点的检测,共检测到了166个miRNA对应的227个靶基因发生降解。进一步分析发现,在miRNA-靶基因对中,有超过80%的miRNA对应多个靶基因,单个miRNA对应靶基因的数目从2到26个不等,只有12个miRNA分别只对应1个的靶基因。此外,还发现普遍存在单个靶基因受控于多个miRNA调节的情况。这表明miRNA与靶基因之间存在着复杂的调控网络。（3）应用geNorm、NormFinder和Bestkeeper软件对8候选miRNA的内参基因进行稳定性评价。3款软件评价结果表明,mdm-miR11004是红花草莓花色相关的miRNA实时荧光定量的最适候选内参基因,bdi-miR159a是在红花草莓所有组织样品中表达最不稳定的内参基因。（4）通过对miRNA、转录组和降解组测序数据进行联合分析,初步筛选得到了33个和红花草莓花色形成相关的候选miRNAs和其对应的40个靶基因。并选择了8个花色相关的候选miRNA在不同颜色红花草莓花瓣中进行qRT-PCR表达特性分析。初步获得了可能通过负调控的模式参与到花色的调控中2个miRNA及其对应的靶基因,即mdm-miR159d与靶基因NCL1和csi-miR156f-p5与靶基因SPL13和MYB44。这2个miRNAs在红花草莓花青素苷的生物合成中可能具有重要的作用。
丁言[5]（2019）在《红花草莓花瓣呈色相关基因表达分析及花色分子标记》文中认为草莓属植物均开白花。红花草莓为属间杂种（Fragaria×Potentilla）,是一种新型的观赏兼食用的多年生草本花卉。花色是决定红花草莓观赏价值的重要性状,花瓣的颜色覆盖了整个红色系。花色的形成不只是花青素显示的结果而是涉及到很多其他的因素诸如细胞形状、辅色素和液泡pH等。花青素苷是红花草莓花瓣的主要色素,本研究拟对红花草莓花青素苷合成途径相关基因表达与花青素苷含量的关系进行分析,并开发与红色花性状相关的分子标记,这对了解红花草莓花青素苷合成途径的机制和分子育种具有重要意义。本研究以红花草莓杂交后代为试材,通过花瓣解剖结构观察,花瓣主要呈色色素测定,花青素苷含量分析,花瓣pH值和抗氧化活力测定,系统研究了红花草莓花色形成的物质基础和理化因素。进一步基于RNA-seq技术测定红花草莓品种‘四季红’的花瓣三个发育阶段（‘L’,‘Z’和‘D’）的转录组,利用qRT-PCR研究了花青素苷合成途径相关的结构基因和转录调控基因在红花草莓不同花色中的转录水平变化,及其与花青素苷含量的相关性。同时,以转录组序列信息结合SSR标记技术,筛选与红花草莓花色性状相关的分子标记。研究结果为红花草莓分子标记辅助育种奠定理论基础和实践依据。主要研究结果如下:利用色差仪和比色卡对红花草莓杂交后代5种不同花色,红色、深粉色、粉色、浅粉色和白色进行了测量。结果表明,a*（红度）与b*（黄度）的相关性不明显,而L*（亮度）与a*（红度）和C*（彩度）均呈明显的负相关关系;使用扫描电镜观察红花草莓花瓣面表皮细胞结构,发现红色、深粉色和粉色花瓣表皮细胞形状都呈无规则镶嵌型,细胞表皮趋于平缓。而白色花瓣和浅粉色花瓣表皮细胞形状为球（卵）形凸起;采用特征显色反应和紫外-可见光谱,初步确定了红色系花瓣中的呈色色素类型是花青素苷和黄酮类,两种色素复合形成花色。花青素作为主要的呈色色素,黄酮类作为协同着色色素。白色花瓣中的呈色色素类型为黄酮类化合物,花瓣中均不含胡萝卜素;采用徒手切片法,观察花瓣解剖结构,发现红花草莓花瓣纵切面分为上表皮、栅栏组织、海绵组织和下表皮,具有典型结构特征;pH示差法测定花瓣中花青素苷含量,发现随着花瓣红色饱和亮度逐一递减花青素苷含量也随之降低。五个花色中,红色和深粉色花具有更强的抗氧化活性。基于RNA-seq文库,筛选得到表达差异不显着的候选内参基因BZIP、TIM、TUB、EF1a、AP2和TIP41。采用geNorm、Normfinder、BestKeeper三种软件和比较△Ct法分析各候选内参基因在不同试验条件下基因表达的稳定性。结果表明,不同的统计分析方法得到的结果也有所不同。在所有样品中,使用geNorm和BestKeeper统计分析结果的稳定性前两名均是AP2与TIP41;在不同花色中,使用geNorm、NormFinder、BestKeeper和△Ct统计分析结果的稳定性前两名也均是AP2与TIP41;在不同倍性中,使用NormFinder、BestKeeper和△Ct统计分析结果的稳定性前两名均是AP2与EF1a;从四款软件的整体分析结果中,发现稳定性最高的为AP2,其次是TIP41。通过geNorm配对系数V值,确定了准确定量实验结果所需的最适内参基因数目为2个,内参的最佳组合为AP2+TIP41。通过RNA-seq,利用qRT-PCR分析红花草莓花瓣花青素苷合成途径上的20个结构基因和2个转录调控基因在不同花色中基因表达量,同时建立了基因表达量与总花青素苷含量的线性回归方程,分析其相关性。结果表明,大部分结构基因的表达量与总花青素苷含量呈正相关,只有FpFLS（R2=0.001）、FpANR（R2=0.0069）、FpGT1（R2=0.018）、FpUGT75C1（R2=0.276）的表达量均与总花青素苷含量的相关性不显着。2个MYB转录因子基因中,FpMYB10在不同花色的表达量与总花青素含量呈极显着正相关,在花青素苷合成过程中正向调控。但FpMYB6在不同花色的表达量与总花青素含量呈负相关,在花青素苷积累过程中负向调控。基于RNA-seq已知基因中的SSR,分析红花草莓转录组测序中获得的genic-SSRs的特征。发现红花草莓转录组中SSR位点的类型丰富,从139,292个转录本中鉴定出12,077个unigenes,共发现14,264个SSR位点。其中有1823条unigenes含有多于1个SSR位点,有758个SSR位点以复杂的形式存在。在所有重复类型中,SSR长度范围为10至228bp,平均长度为16.58bp。由单碱基重复至六碱基重复均有分布,每个重复类型所含的数量差异较大。在鉴定的SSR中,搜索到了176个基序序列类型,最丰富的重复序列类型是二核苷酸型（GA 21.33%）。在编码区的三核苷酸重复序列中,AGG/CCT基序是频率最高的。二核苷酸重复序列中,AC/GT基序是红花草莓中最常见的。基于转录组深度测序开发了4个特异性SSR分子标记,这些标记可有效标记红色系花色性状,在红花草莓幼苗期即可有效区分开红色系花实生苗,可有效缩短红花草莓的育种周期。
薛莉,刘玉,吴雪,王晨,何静娟,岳静宇,雷家军[6]（2019）在《红花草莓粉佳人与俏佳人杂交后代花与果实性状调查分析》文中研究说明红花草莓是新兴的观赏兼食用的园艺植物,具较高的观赏价值。红花草莓在花色、果实品质等方面的育种取得了一定进展,但目前育成的红花草莓品种很少,且花色较单一（主要集中在粉色）,果实品质较差。红花草莓不同花色之间的杂交,其后代花色和果实性状方面研究鲜见报道。以红花草莓品种粉佳人（花粉色）与俏佳人（花深粉色）为亲本进行正反交,调查杂交后代花色和果实品质。结果表明:粉佳人×俏佳人和俏佳人×粉佳人这2个组合的杂交结实率分别为9.85%和9.09%,播种出苗率分别为20.80%和2.64%;杂交后代花色分离明显,出现了红色、深粉色、粉色、浅粉色和白色。获得了花色艳丽的新种质,个别株系花色出现花瓣基部色深的性状。有42株后代在花大小、单序花朵数等性状明显优于亲本;杂交后代果实形状多数为圆锥形,还有楔形、短圆锥形、长圆锥形、圆形及带果颈等形状,果实大小差异明显,单果重为5.2～22.9g。杂交后代果实品质性状变异较大,可溶性固形物含量为6.1%～12.5%,可滴定酸为0.2%～1.5%,维生素C含量为17.3～116.2mg·100g-1。从2个正反交后代248株杂种中,筛选出了6个果实较大、花色红艳的株系,其中5-21,5-56,6-1,6-57均为红色株系,花色深而艳丽,可用于观赏或用于培育红花草莓红色品种的亲本;优系5-17和5-39则果实较大、芳香,花深粉红色,适于观赏和鲜食。本研究选育出的不同花色优系尤其是红色种质有较大的研究和应用价值。
王冲,李迎薪,李向辉,岳静宇,李文清,雷家军[7]（2019）在《红花草莓与栽培品种杂交后代花及果实性状调查》文中指出以2个红花草莓品种"粉佳人"和"俏佳人"与1个白花栽培品种"哈尼"进行正反交,调查了杂交结实、播种出苗及杂交后代实生苗的花色、果实品质等性状,旨在培育出观赏兼食用的红花草莓新优系,同时也为红花草莓杂交育种提供参考依据。结果表明:"哈尼"作母本时,"哈尼×粉佳人"与"哈尼×俏佳人"2个杂交组合的结实率分别为73.21%和70.21%,作父本时分别为20.13%和32.96%。4个组合杂交后代中,红花与白花植株数比例约为1∶2.3;红花颜色深浅程度不同,颜色主要分布在白色、浅粉色、粉色、深粉色、红色这5个色系,有的出现花瓣基部深和白色花斑的现象。"哈尼×粉佳人"杂交后代最大单果质量变异范围在10.4～27.4g,没有超亲株系;"粉佳人×哈尼"杂交后代平均单果质量可达15.2g,最大果质量59.4g,可为以后的大果培育做中间材料。"哈尼"与"粉佳人"正反交后代的平均单果质量、单株产量、硬度等方面并未表现出明显的超高亲现象,但出现2个维生素C含量较高红花草莓单株,分别为116.2mg·（100g）-1和104.9mg·（100g）-1,超亲现象明显,显着优于亲本。
梁吉昌[8]（2018）在《红花草莓花色对温度的响应及花色相关基因表达分析》文中提出红花草莓为属间杂种（Fragaria×Potentilla）,是草莓家族新成员,具有很高的观赏性和经济价值,花色为红花草莓最主要的观赏性状,随着温度的变化而变化,目前有关温度对红花草莓花色的影响鲜有报道。本研究以四季红花草莓品种‘粉韵’（SF）和‘小桃红’（XO）为试材,在不同温度条件处理后,观察花色变化情况,并测定其色度值的变化,通过pH示差法来测定红花草莓花瓣中花青素苷的含量;测定红花草莓花色相关生理指标并结合花瓣的色度值变化情况进行相关性分析;通过实时荧光定量分析对红花草莓花色呈现起调控作用的相关基因在不同温度条件处理后的基因表达水平,探究红花草莓花色对温度的响应及其作用机理,为红花草莓园林应用、花期及花色调控奠定理论基础。主要结论如下:两个红花草莓品种在不同温度处理后,在30℃时花瓣均呈显白色或略显极淡粉色,此时两者亮度值L*均较高,当温度为15℃时,两种红花草莓品种花瓣均呈现红色或者深红色,即随着温度升高,花青素苷含量降低,花色减退,亮度值L*升高;而温度降低时,花青素苷的积累量增加,花色加深,花瓣的亮度值L*降低,表明亮度值L*与红花草莓花瓣花青素苷含量呈负相关关系,花青素苷的含量变化与红绿参数a*值呈显着正相关关系,与彩度参数值C*也呈显着正相关关系,花青素苷的积累量决定着红花草莓花瓣的着色程度;而黄蓝参数值b*则不受温度影响。本试验通过pH示差法进行红花草莓花瓣花青素苷含量的测定,采用0.2%甲酸甲醇溶液浸泡提取红花草莓花瓣中的花青素苷。两种红花草莓品种在不同温度处理后花青素含量测定结果为在15℃时最高,此时花瓣颜色最深,呈红色或者深红色。在30℃时花青素含量最低,此时花瓣略显极浅粉色或白色。随着温度升高,花青素苷含量降低,其含量的变化情况与花瓣颜色在不同温度下的呈现结果一致,且不同温度处理后,花青素苷含量变化具有显着差异性。本试验中,两个红花草莓品种在不同温度处理后花瓣中PAL酶的活性变化趋势为:随着温度的升高,PAL酶的活性逐渐减弱,在15℃时活性均最高,30℃时活性最低,两者分别降低了61.84%和68.59%,除了15℃时活性最高,其他温度下活性变化比较平缓。CHI酶活性变化趋势与PAL酶活性大体类似,都是在15℃时活性最高,CHI酶活性同样受到温度的调控参与花青素苷的合成,在25℃与30℃时,CHI酶活性变化很小,即此时CHI酶活性基本上趋于稳定。在红花草莓品种‘粉韵’中,15℃与20℃之间,两种红花草莓品种花瓣中可溶性糖含量变化分别为6.77%,25℃与30℃相比,可溶性糖含量变化分别为9.86%,可溶性糖含量变化均不显着,而在红花草莓品种‘小桃红’中,虽然15℃与20℃之间可溶性糖含量略有差异,但25℃与30℃之间,可溶性糖含量差异不显着,与两种红花草莓品种花瓣中花青素苷含量相比,发现两者的含量变化趋势并不一致,可溶性糖的含量与花青素苷的含量呈正相关性,但是关系不显着。蛋白质含量与PAL酶和CHI酶的活性表现较为一致,而蛋白质含量在各个温度下均呈显着性差异,可能是因为蛋白质含量不仅与酶活性有关,在温度较低时,蛋白质参与一定的生理代谢反应,适应外界环境变化,温度升高时蛋白质含量逐渐降低,可能与蛋白质变性,逐渐丧失活性有关。两个红花草莓品种在不同温度条件下处理后,发现在温度较低时,CHS、ANS、DFR和UFGT四个基因均有较高的表达量,15℃时的基因表达量远远大于30℃的基因表达量,即在温度较低时基因表达水平非常高,此时花青素苷的积累量较高,表明CHS、ANS、DFR和UFGT四个基因在一定程度上参与了调控花青素苷的合成,且其表达水平与温度呈显着的正相关性,可能是造成花青素苷积累、影响花色深浅的主要结构基因。
张屹,赵琳,赫嵩,雷家军,薛莉[9]（2018）在《红花草莓‘俏佳人’与白花品种‘佐贺清香’杂交后代性状调查》文中研究说明[目的]改良重要性状,培育观赏兼食用的红花草莓新品种。[方法]通过红花草莓品种‘俏佳人’（花深粉色）与栽培品种‘佐贺清香’（花白色）进行杂交,改良红花草莓的果实等重要性状。[结果]以‘俏佳人’为父本的结实率（60.0%）高于其作为母本时的32.3%;后代花色虽发生分离,但均浅于‘俏佳人’;后代的果实形状变化较大,有的果实品质、大小等性状显着优于红花亲本。[结论]从后代中筛选出观赏兼食用的红花草莓新种质,如株系1-31、2-23等,花色鲜艳、果实品质优良。
常琳琳,董静,钟传飞,孙健,孙瑞,石琨,王桂霞,张运涛[10]（2018）在《中国育成草莓品种的系谱分析》文中研究指明【目的】调查统计1953—2016年我国培育的草莓品种,分析其亲本的类型和来源,归纳出草莓育种亲本选配规律。【方法】利用我国育成的108个草莓品种的系谱资料,探究其直接亲本和原始亲本组成,计算亲本的遗传贡献值。【结果】1953—2016年我国共育成草莓品种108个,其中3个品种遗传背景不详,因此仅对剩余105个亲本来源清楚的品种进行统计分析。105个草莓品种涉及直接亲本85个、原始亲本68个。‘红颜’和‘甜查理’作为原始亲本,使用频数最高,分别衍生出17个和15个品种,遗传贡献值分别为8.1%和7.7%。【结论】杂交选育是我国草莓育种的主要途径,利用欧美品种与日韩品种杂交育成品种的比例占58.9%。我国草莓育种中衍生品种数较多的亲本为‘红颜’和‘甜查理’,早熟、品质优、抗病是我国草莓领域主要的育种方向。
二、观赏草莓“粉红熊猫”（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、观赏草莓“粉红熊猫”（论文提纲范文）
（1）红花草莓ABC基因家族鉴定及FpABC基因克隆表达分析（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 红花草莓育种研究 |
| 1.1.1 红花草莓的来源 |
| 1.1.2 红花草莓的育种概况 |
| 1.2 植物花青素苷的合成与转运研究 |
| 1.2.1 植物花青素苷概述 |
| 1.2.2 植物花青素苷合成调控研究 |
| 1.2.3 植物花青素苷转运调控研究 |
| 1.3 植物ABC转运蛋白的相关研究 |
| 1.3.1 植物ABC转运蛋白的结构与作用机理 |
| 1.3.2 植物ABC转运蛋白的分类及功能 |
| 1.4 本课题研究的目的与意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.1.1 植物材料 |
| 2.1.2 主要试剂 |
| 2.1.3 主要药品配制 |
| 2.1.4 所用引物 |
| 2.1.5 主要仪器 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 ABC基因家族生物信息学分析 |
| 2.2.1.1 ABC基因家族的筛选与鉴定 |
| 2.2.1.2 ABC基因家族理化性质分析 |
| 2.2.1.3 ABC基因家族基因结构分析 |
| 2.2.1.4 ABC基因家族聚类 |
| 2.2.1.5 ABC基因家族染色体定位 |
| 2.2.2 红花草莓花青素苷转运相关FpABC基因的筛选 |
| 2.2.3 花青素苷转运相关基因克隆及序列分析 |
| 2.2.3.1 总RNA提取定 |
| 2.2.3.2 RNA质量检测 |
| 2.2.3.3 反转录合成c DNA |
| 2.2.3.4 PCR扩增 |
| 2.2.3.5 胶回收 |
| 2.2.3.6 目的片段与载体连接、转化 |
| 2.2.3.7 阳性克隆的鉴定与测序 |
| 2.2.3.8 基因的序列比对与进化分析 |
| 2.2.4 红花草莓FpABC基因表达分析 |
| 2.2.4.1 总RNA提取 |
| 2.2.4.2 反转录合成c DNA |
| 2.2.4.3 qRT-PCR |
| 2.2.4.4 数据处理分析 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 红花草莓FpABC基因家族生物信息学分析 |
| 3.1.1 红花草莓FpABC家族基因的筛选与鉴定 |
| 3.1.2 红花草莓FpABC基因家族理化性质分析 |
| 3.1.3 红花草莓FpABC基因家族基因结构分析 |
| 3.1.4 红花草莓FpABC基因家族基因启动子分析 |
| 3.1.5 红花草莓FpABC基因家族系统进化分析 |
| 3.1.6 红花草莓FpABC基因家族染色体定位分析 |
| 3.2 红花草莓花瓣花青素苷转运相关FpABC基因筛选 |
| 3.3 红花草莓花青素苷转运相关基因克隆及序列分析 |
| 3.3.1 总RNA质量检测 |
| 3.3.2 红花草莓基因的克隆分析 |
| 3.4 红花草莓花青素苷转运相关FpABC基因表达模式分析 |
| 3.4.1 红花草莓莓花青素苷转运相关FpABC基因在不同花色中的表达 |
| 3.4.2 红花草莓花青素苷转运相关FpABC基因不同发育时期中的表达 |
| 3.4.3 红花草莓花青素苷转运相关FpABC基因在不同器官中的表达 |
| 4 讨论 |
| 4.1 红花草莓ABC基因家族的生物信息学分析 |
| 4.2 红花草莓花青素苷转运相关FpABC基因克隆及序列分析 |
| 4.3 红花草莓花青素苷转运相关FpABC基因表达模式分析 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（2）‘莓红’草莓花瓣发育过程花色苷变化及相关基因的差异表达研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 绪论 |
| 1 红花草莓育种现状及应用价值 |
| 2 植物花色的形成 |
| 2.1 花色素种类 |
| 2.1.1 类黄酮 |
| 2.1.2 类胡萝卜素 |
| 2.1.3 生物碱 |
| 2.2 花色的成色作用 |
| 3 植物花色苷研究进展 |
| 3.1 植物花色苷基本结构及功能 |
| 3.1.1 花色苷基本结构 |
| 3.1.2 花色苷的功能 |
| 3.2 植物花色苷的生物合成途径 |
| 3.3 植物花色苷生物合成的调控 |
| 3.3.1 内在因子及环境因子对花色苷生物合成的调控 |
| 3.3.2 转录因子对花色苷生物合成的调控 |
| 4 本研究的目的意义、主要内容 |
| 4.1 本研究的目的及意义 |
| 4.2 本研究的主要内容 |
| 第二章 ‘莓红’草莓花器官发育观察 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验方法 |
| 1.2.1 花朵基本性状观察 |
| 1.2.2 花朵盛开时期观察 |
| 1.2.3 数据统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 ‘莓红’草莓花朵基本性状 |
| 2.1.1 花瓣数、萼片数和雄蕊数分析 |
| 2.1.2 花瓣间着生状态分析 |
| 2.1.3 花冠径分析 |
| 2.1.4 花色分析 |
| 2.2 ‘莓红’草莓花朵盛开时期分析 |
| 3 讨论 |
| 第三章 ‘莓红’草莓花瓣色素分析 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验方法 |
| 1.2.1 色素类型初步分析 |
| 1.2.2 花色苷总含量测定 |
| 1.2.3 花色苷组分定性分析 |
| 1.2.4 数据统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 ‘莓红’草莓花瓣色素类型的鉴定 |
| 2.2.1 特征显色反应 |
| 2.2.2 紫外可见光谱分析 |
| 2.2 ‘莓红’草莓花瓣不同发育时期花色苷含量 |
| 2.3 ‘莓红’草莓花瓣花色苷组分分析 |
| 3 讨论 |
| 第四章 ‘莓红’草莓花瓣花色苷合成相关基因的筛选与表达分析 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 转录组质量评估 |
| 1.2.1 RNA提取与质量检测 |
| 1.2.2 文库制备与测序 |
| 1.2.3 测序数据质控 |
| 1.2.4 序列比对 |
| 1.3 基因表达量和样本关系分析 |
| 1.3.1 基因表达量计算 |
| 1.3.2 样本关系分析 |
| 1.4 差异基因分析 |
| 1.5 花色苷合成相关结构基因的分析 |
| 1.6 花色苷合成相关R2R3-MYB和 b HLH基因的分析 |
| 1.6.1 R2R3-MYB和 b HLH转录因子的鉴定 |
| 1.6.2 R2R3-MYB和 b HLH基因与花色苷含量的相关性分析 |
| 1.6.3 R2R3-MYB和 b HLH基因的系统发育树分析 |
| 1.7 花色苷合成相关差异基因的q RT-PCR验证 |
| 1.7.1 RNA的提取与反转录 |
| 1.7.2 引物设计与引物特异性分析 |
| 1.7.3 q RT-PCR反应 |
| 1.8 数据处理 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 转录组质量评估结果 |
| 2.2 基因表达量和样本关系分析 |
| 2.2.1 基因表达量分析 |
| 2.2.2 样本关系分析 |
| 2.3 差异基因分析 |
| 2.3.1 差异基因统计 |
| 2.3.2 差异基因趋势分析 |
| 2.3.3 差异基因KEGG功能注释及富集分析 |
| 2.4 花色苷合成相关结构基因的分析 |
| 2.4.1 差异结构基因的鉴定 |
| 2.4.2 差异结构基因的表达分析 |
| 2.5 花色苷合成相关R2R3-MYB和 b HLH基因的分析 |
| 2.5.1 R2R3-MYB和 b HLH转录因子的鉴定 |
| 2.5.2 差异R2R3-MYB和 b HLH转录因子的表达分析 |
| 2.5.3 R2R3-MYB和 b HLH转录因子与花色苷含量的相关性分析 |
| 2.5.4 R2R3-MYB和 b HLH基因的系统发育树分析 |
| 2.6 花色苷合成相关差异基因的q RT-PCR验证 |
| 2.6.1 引物特异性分析 |
| 2.6.2 花色苷合成相关差异基因的表达分析 |
| 3 讨论 |
| 第五章 结论与展望 |
| 1 结论 |
| 2 展望 |
| 参考文献 |
| 附录 系统发育树蛋白序列信息 |
| 攻读学位期间的学术论文与研究成果 |
| 致谢 |
（3）红花草莓花青素苷合成结构基因FpDFR、FpANS及启动子的克隆与分析（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 红花草莓育种研究 |
| 1.2 植物花青苷合成途径中结构基因研究 |
| 1.2.1 上游基因研究 |
| 1.2.2 下游基因研究 |
| 1.3 植物花青苷合成途径中启动子研究 |
| 1.4 本研究的目的与意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.1.1 植物材料 |
| 2.1.2 主要试剂和药品 |
| 2.1.3 试验中所用引物 |
| 2.1.4 培养基和溶液的配制 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 总RNA和 DNA的提取 |
| 2.2.2 反转录合成第一链c DNA |
| 2.2.3 qRT-PCR引物的设计和反应体系 |
| 2.2.4 基因和启动子序列的克隆 |
| 2.2.5 PCR扩增和目的片段回收 |
| 2.2.6 连接T载和大肠杆菌转化 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 红花草莓转录组数据筛选 |
| 3.2 红花草莓花青素苷合成途径中结构基因FpDFR和 FpANS的生物信息学分析 |
| 3.2.1 红花草莓结构基因FpDFR1 的生物信息学分析 |
| 3.2.2 红花草莓结构基因FpDFR2 的生物信息学分析 |
| 3.2.3 红花草莓结构基因FpDFR3 的生物信息学分析 |
| 3.2.4 红花草莓结构基因FpANS1 的生物信息学分析 |
| 3.3 红花草莓花青素苷合成途径结构基因FpDFR和 FpANS表达分析 |
| 3.3.1 红花草莓花瓣RNA提取质量检测和RT-PCR鉴定 |
| 3.3.2 红花草莓不同组织部位FpDFR和 FpANS基因的表达分析 |
| 3.3.3 红花草莓不同花色花瓣FpDFR和 FpANS基因的表达分析 |
| 3.3.4 红花草莓不同时期花瓣FpDFR和 FpANS基因的表达分析 |
| 3.4 红花草莓花青素苷合成途径中启动子FpDFR和 FpANS的生物信息学分析 |
| 3.4.1 红花草莓FpDFR和 FpANS启动子的基本特征元件分析 |
| 3.4.2 红花草莓FpDFR和 FpANS启动子的结合位点分析 |
| 4 讨论 |
| 4.1 花青素苷合成途径中DFR基因家族结构分析 |
| 4.2 红花草莓杂交后代红白花中DFR和 ANS基因差异表达分析 |
| 4.3 花青素苷合成途径中DFR和 ANS基因启动子的克隆与分析 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（4）红花草莓花色相关miRNA的鉴定与分析（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 植物花青素苷研究进展 |
| 1.1.1 植物花青素苷概述 |
| 1.1.2 植物花青素苷的生物合成途径 |
| 1.1.3 调控植物花青素苷合成的结构基因 |
| 1.1.4 调控植物花青素苷合成的转录因子 |
| 1.1.5 植物花青素苷合成的外界影响因素 |
| 1.2 植物miRNA研究进展 |
| 1.2.1 植物miRNA的产生及作用方式 |
| 1.2.2 植物miRNA的鉴定、表达分析方法 |
| 1.2.3 植物miRNA内参基因相关研究 |
| 1.2.4 植物miRNA对花青素苷的调控研究 |
| 1.3 红花草莓育种研究进展 |
| 1.3.1 红花草莓的来源 |
| 1.3.2 红花草莓杂交育种研究 |
| 1.3.3 红花草莓分子育种研究 |
| 1.4 本研究的目的与意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 总RNA的提取及质量检测 |
| 2.2.2 小RNA和降解组文库的构建 |
| 2.2.3 小RNA数据分析 |
| 2.2.4 红花草莓花瓣不同发育阶段差异表达miRNAs的分析 |
| 2.2.5 降解组测序数据的分析 |
| 2.2.6 靶基因功能注释 |
| 2.2.7 候选内参基因的筛选及引物设计与合成 |
| 2.2.8 反转录c DNA第一条链的合成 |
| 2.2.9 候选内参基因的荧光定量及扩增效率检测 |
| 2.2.10 候选内参基因表达稳定性评价 |
| 2.2.11 红花草莓花色相关miRNA的筛选 |
| 2.2.12 红花草莓花色相关miRNA及对应靶基因表达水平的qRT-PCR验证 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 红花草莓miRNAs表达谱分析 |
| 3.1.1 红花草莓miRNA测序基本数据分析 |
| 3.1.2 红花草莓保守miRNAs的鉴定与新miRNAs的预测 |
| 3.1.3 红花草莓miRNAs碱基偏好性分析 |
| 3.1.4 miRNAs差异表达分析 |
| 3.2 红花草莓降解组测序数据分析 |
| 3.2.1 降解组测序数据分析 |
| 3.2.2 利用降解组测序获得红花草莓miRNA的靶基因 |
| 3.2.3 红花草莓miRNA靶基因的GO富集分析 |
| 3.2.4 红花草莓miRNA靶基因的KEGG富集分析 |
| 3.2.5 红花草莓miRNA靶基因的Pathway显着富集分析 |
| 3.2.6 红花草莓miRNA趋势分析 |
| 3.3 红花草莓miRNA内参基因的筛选 |
| 3.3.1 候选内参基因引物特异性及PCR效率分析 |
| 3.3.2 候选内参基因表达水平的稳定性分析 |
| 3.4 红花草莓花色相关的miRNA与靶基因分析 |
| 3.5 红花草莓花色相关miRNA及对应靶基因表达特性分析 |
| 4 讨论 |
| 4.1 红花草莓miRNA数据库及靶基因功能注释 |
| 4.2 红花草莓花色相关miRNA的最适内参基因 |
| 4.3 红花草莓花色形成相关miRNA与靶基因挖掘 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（5）红花草莓花瓣呈色相关基因表达分析及花色分子标记（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 红花草莓及其育种进展 |
| 1.1.1 红花草莓简介 |
| 1.1.2 红花草莓育种现状 |
| 1.2 花青素苷合成途径及关键酶 |
| 1.2.1 花青素生物合成 |
| 1.2.2 花青素的结构与分布 |
| 1.2.3 花青素苷生物合成途径分支 |
| 1.2.4 花青素苷生物合成关键酶 |
| 1.3 花青素苷合成的调控 |
| 1.4 草莓分子标记研究进展 |
| 1.5 本研究的意义及内容 |
| 1.5.1 研究意义 |
| 1.5.2 研究内容 |
| 第二章 红花草莓花瓣色素分析 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 花色测定 |
| 2.1.3 花瓣解剖结构观察 |
| 2.1.4 花瓣扫描电镜观察 |
| 2.1.5 花瓣细胞液p H测定 |
| 2.1.6 花瓣抗氧化活力测定 |
| 2.1.7 花瓣色素类型初步定性 |
| 2.1.8 花瓣花青素苷pH示差法测定 |
| 2.1.9 数据处理 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 红花草莓杂交后代花色分析 |
| 2.2.2 红花草莓不同花色花瓣色素的初步鉴定 |
| 2.2.3 红花草莓不同花色花瓣表皮细胞特征及色素分布 |
| 2.2.4 红花草莓花瓣花青素苷pH示差法测定 |
| 2.2.5 红花草莓不同花色花瓣抗氧化活力分析 |
| 2.3 讨论 |
| 2.3.1 红花草莓花色测定分析 |
| 2.3.2 红花草莓花色素在花瓣中的分布 |
| 2.3.3 红花草莓花青素苷含量、色素分布、pH值对花色形成的影响 |
| 2.4 本章小结 |
| 第三章 红花草莓qRT-PCR内参基因的筛选 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 试验材料 |
| 3.1.2 试剂 |
| 3.1.3 RNA提取、质量检测及cDNA合成 |
| 3.1.4 转录组测序 |
| 3.1.5 候选内参基因引物设计 |
| 3.1.6 内参基因的qRT-PCR分析 |
| 3.1.7 表达稳定性分析 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 引物特异性分析 |
| 3.2.2 引物的扩增效率分析 |
| 3.2.3 内参基因的表达稳定性分析 |
| 3.3 讨论 |
| 3.3.1 基于转录组数据筛选内参基因的有效性 |
| 3.3.2 用于红花草莓花青素苷生物合成内参基因的稳定性 |
| 3.4 本章小结 |
| 第四章 红花草莓花青素苷合成相关基因表达分析 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 植物材料 |
| 4.1.2 RNA提取、质量检测及cDNA合成 |
| 4.1.3 花色形成相关基因筛选 |
| 4.1.4 qRT-PCR引物的设计和合成 |
| 4.1.5 qRT-PCR反应程序及体系 |
| 4.1.6 qRT-PCR数据分析 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 红花草莓花瓣RNA提取与RT-PCR鉴定引物 |
| 4.2.2 红花草莓花青素苷合成相关基因的表达分析 |
| 4.2.3 红花草莓花青素苷合成相关结构基因表达的系统聚类分析 |
| 4.3 讨论 |
| 4.3.1 结构基因的表达丰度与花青素苷含量的相关性 |
| 4.3.2 两个MYB调控基因的表达差异和其与花青素苷的相关性 |
| 4.4 本章小结 |
| 第五章 红花草莓花色相关的SSR分子标记 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 试验材料 |
| 5.1.2 主要试剂及缓冲液配方 |
| 5.1.3 SSR位点查找与统计 |
| 5.1.4 DNA提取 |
| 5.1.5 DNA质量和浓度检测 |
| 5.1.6 引物设计及合成 |
| 5.1.7 SSR-PCR扩增反应体系 |
| 5.1.8 聚丙烯酰胺凝胶电泳与银染检测 |
| 5.1.9 扩增数据统计 |
| 5.1.10 不同花色杂交后代特异性标记验证 |
| 5.2 结果分析 |
| 5.2.1 SSR位点数量及重复类型分布特点 |
| 5.2.2 SSR位点重复单元及频率 |
| 5.2.3 DNA质量和浓度检测 |
| 5.2.4 SSR引物的有效性检测 |
| 5.2.5 SSR多态性引物的筛选 |
| 5.2.6 不同花色杂交后代对特异性引物验证 |
| 5.2.7 特异性片段序列分析 |
| 5.3 讨论 |
| 5.3.1 红花草莓转录组中genic-SSRs的特征 |
| 5.3.2 分子标记辅助育种在红花草莓新品种选育中的应用 |
| 5.4 本章小结 |
| 第六章 结论与创新点 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 创新点 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
| 攻读博士期间发表的学术论文 |
（6）红花草莓粉佳人与俏佳人杂交后代花与果实性状调查分析（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 人工杂交 |
| 1.2.2 花色测量 |
| 1.2.3 花和果实性状调查 |
| 1.2.4 果实品质的测定 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 红花草莓杂交后代的结实率和出苗率 |
| 2.2 红花草莓杂交后代的花色表型 |
| 2.3 红花草莓杂交后代花和果实性状分析 |
| 2.3.1 花和花序 |
| 2.3.2 果实 |
| 2.4 红花草莓杂交后代果实品质分析 |
| 3 讨论与结论 |
（7）红花草莓与栽培品种杂交后代花及果实性状调查（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验方法 |
| 1.2.1 种间杂交 |
| 1.2.2 花性状调查 |
| 1.2.3 果实性状及品质测定 |
| 1.3 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 红花草莓与栽培品种杂交结实及播种出苗情况 |
| 2.2 红花草莓与白花品种杂交后代花及花序性状 |
| 2.2.1 杂交后代花色分离情况 |
| 2.2.2 杂交后代花性状 |
| 2.3 红花草莓与白花品种杂交后代果实性状及品质测定 |
| 3 讨论 |
（8）红花草莓花色对温度的响应及花色相关基因表达分析（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 红花草莓的来源和应用概况 |
| 1.2 植物花青素苷研究进展 |
| 1.2.1 花青素苷概述 |
| 1.2.2 花青素苷生物合成途径 |
| 1.3 温度对花青素苷的影响 |
| 1.3.1 温度对花青素苷含量的影响 |
| 1.3.2 温度对花青素苷稳定性的影响 |
| 1.3.3 温度对花青素苷合成相关基因表达的调控 |
| 1.4 植物花色相关生理指标的研究进展 |
| 1.5 本研究的目的及意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 温度处理 |
| 2.2.2 花色色度值测量 |
| 2.2.3 花青素苷含量测定 |
| 2.2.4 苯丙氨酸解氨酶活性测定 |
| 2.2.5 查尔酮异构酶活性测定 |
| 2.2.6 可溶性糖含量测定 |
| 2.2.7 可溶性蛋白质含量测定 |
| 2.2.8 花瓣总RNA提取 |
| 2.2.9 RNA的质量及纯度检测 |
| 2.2.10 引物设计与合成 |
| 2.2.11 RT-PCR |
| 2.2.12 实时荧光定量PCR |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 不同温度处理对红花草莓花色变化及花青素含量的影响 |
| 3.1.1 花瓣颜色变化 |
| 3.1.2 花瓣色度值的变化 |
| 3.1.3 花色参数之间的关系 |
| 3.1.4 花瓣花青素苷含量 |
| 3.2 不同温度处理对红花草莓相关生理指标的影响 |
| 3.2.1 PAL酶活性 |
| 3.2.2 CHI酶活性 |
| 3.2.3 蛋白质含量 |
| 3.2.4 可溶性糖含量 |
| 3.2.5 相关性分析 |
| 3.3 红花草莓花色相关基因表达分析 |
| 3.3.1 花瓣总RNA提取 |
| 3.3.2 花色形成相关基因的表达分析 |
| 4 讨论 |
| 4.1 温度对红花草莓花瓣色度值变化的影响 |
| 4.2 温度对植物花色相关生理指标的影响 |
| 4.3 温度对花色相关基因表达的影响 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
（9）红花草莓‘俏佳人’与白花品种‘佐贺清香’杂交后代性状调查（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 红花草莓‘俏佳人’与栽培品种‘佐贺清香’回交播种出苗情况 |
| 2.2 红花草莓‘俏佳人’与栽培品种‘佐贺清香’回交后代调查 |
| 2.2.1 植株、叶性状。 |
| 2.2.2 花和花序性状。 |
| 2.2.3果实性状。 |
| 3讨论 |
（10）中国育成草莓品种的系谱分析（论文提纲范文）
| 1 材料和方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 我国育成草莓品种概况 |
| 2.2 我国培育草莓品种的亲本组成 |
| 2.3 我国草莓育种中衍生品种数较多的亲本 |
| 2.3.1‘红颜’ |
| 2.3.2‘甜查理’ |
| 3 讨论 |
| 3.1 草莓育种亲本的选配 |
| 3.2 野生资源在育种中的应用 |
| 3.3 四季型草莓育种 |
| 3.4 种子繁殖型品种的培育 |
四、观赏草莓“粉红熊猫”（论文参考文献）
- [1]红花草莓ABC基因家族鉴定及FpABC基因克隆表达分析[D]. 张松阳. 沈阳农业大学, 2020(08)
- [2]‘莓红’草莓花瓣发育过程花色苷变化及相关基因的差异表达研究[D]. 洪燕红. 福建农林大学, 2020(02)
- [3]红花草莓花青素苷合成结构基因FpDFR、FpANS及启动子的克隆与分析[D]. 黄莹莹. 沈阳农业大学, 2020(08)
- [4]红花草莓花色相关miRNA的鉴定与分析[D]. 王海峰. 沈阳农业大学, 2019(02)
- [5]红花草莓花瓣呈色相关基因表达分析及花色分子标记[D]. 丁言. 沈阳农业大学, 2019(02)
- [6]红花草莓粉佳人与俏佳人杂交后代花与果实性状调查分析[J]. 薛莉,刘玉,吴雪,王晨,何静娟,岳静宇,雷家军. 沈阳农业大学学报, 2019(02)
- [7]红花草莓与栽培品种杂交后代花及果实性状调查[J]. 王冲,李迎薪,李向辉,岳静宇,李文清,雷家军. 北方园艺, 2019(01)
- [8]红花草莓花色对温度的响应及花色相关基因表达分析[D]. 梁吉昌. 沈阳农业大学, 2018(11)
- [9]红花草莓‘俏佳人’与白花品种‘佐贺清香’杂交后代性状调查[J]. 张屹,赵琳,赫嵩,雷家军,薛莉. 园艺与种苗, 2018(01)
- [10]中国育成草莓品种的系谱分析[J]. 常琳琳,董静,钟传飞,孙健,孙瑞,石琨,王桂霞,张运涛. 果树学报, 2018(02)